琼脂酶基因agawj2的克隆表达和酶学性质研究
目录
摘要1
关键词1
Abstract1
Key words1
引言(或绪论)2
1材料与方法2
1.1材料 2
1.1.1材料 2
1.1.2体系、试剂 2
1.2方法 3
1.2.1琼脂酶(agaWJ2)的克隆3
1.2.1.1提取琼脂降解菌 LGH的基因组DNA3
1.2.1.2使用试剂盒提取表达载体pET29a4
1.2.1.3构建PCR体系4
1.2.1.4表达型重组质粒的构建4
1.2.2琼脂糖酶(agaWJ2)基因的转化4
1.2.3琼脂糖酶(agaWJ2)基因的表达4
1.2.4表达产物的功能验证4
1.2.5表达产物的纯化及鉴定 4
1.2.6 SDSPAGE4
1.2.7用薄层层析的方法检测水解产物5
1.2.8重组琼脂酶AgaWJ2酶学性质的研究5
2结果与分析 5
2.1构建携带agaWJ2基因的菌株5
2.2 AgaWJ2的表达和纯化6
2.3 Aga
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WJ2的酶学性质研究6
2.3.1 AgaWJ2的最适pH和pH稳定性7
2.3.2 AgaWJ2的最适温度和温度稳定性7
2.3.3 不同试剂对AgaWJ2的酶解反应影响7
2.3.4 AgaWJ2的酶动力学参数测定8
2.4 AgaWJ2的酶解产物研究9
3讨论 9
3.1琼脂酶AgaWJ2的酶学性质 9
3.2 AgaWJ2的酶解产物鉴定9
致谢10
参考文献10
琼脂酶基因agaWJ2的克隆、表达和酶学性质研究
引言
随着人类对资源的不断探索和利用,陆地资源越来越匮乏,现在人们逐步把目光转移到蕴藏巨量资源的海洋。海洋约占地球总面积的71%[5],拥有丰富的藻类资源,主要有红藻,蓝藻,硅藻,绿藻等。人们通过物理,化学和生物方法从藻类中提取各种具有价值的物质,琼脂就是其中一种。琼脂也可称作琼胶,是从红藻类海藻中提取的一类天然多糖物质。在实验室里,琼脂作为一种难以降解利用的惰性物质,具有很好的稳定性,常作为培养基的支持介质。得益于其稳定性,在食品工业上琼脂作为增稠剂、稳定剂、悬浮剂、凝固剂和乳化剂等使用,是工业用途最为广泛的海藻胶之一[1~3]。在我国琼脂的生产主要来源于江篱。
琼脂是由具有凝胶性质的琼脂糖(agarose)和非凝胶性质的琼脂胶(agaropectin)构成的混合物,并以琼脂糖为主。琼脂糖的化学构成是由βD半乳糖和3,6内醚αL半乳糖等组成的链状线性聚合物,其中硫酸基的含量低于0.15%[4]。琼脂胶的结构与琼脂糖相似,但3,6内醚αL半乳糖上的羟基被硫酸基、甲氧基、丙酮基等基团替代,硫酸基的含量较高,可达5%8%。硫酸酯和丙酮酸的存在会使凝胶强度减弱,若基团链接在C6上,可通过碱处理或硫酸酯酶的作用脱硫,转化为琼脂糖,提高凝胶强度[13]。
新琼寡糖是琼脂经琼脂酶水解后形成聚合度为2~20的海洋功能性低聚糖,主要由琼脂二糖的重复单位连接而成。琼脂粘度高,不溶于水,难以分解利用,新琼寡糖则有很好的水溶性,易于人体吸收利用。随着研究的不断进展和深入,人们逐渐发现新琼寡糖具有很多有意义的生理功能特性。新琼寡糖具有抗癌症,抗炎症,抗病毒,抗氧化,抗龋齿,预防糖尿病,增殖肠道益生菌和美白保湿等生理功能[8~12]。这表明新琼寡糖在医用药物,保健品,功能饲料和化妆品等方面有着很好的应用前景[5][6]。
目前获得新琼寡糖的主要方法有酸解法和酶解法,而酸解法存在污染大和效率低等缺点,酶解法有着效率高、污染小和反应条件温和等优势,代替酸解法是未来的趋势。
1材料与方法
1.1实验材料
1.1.1材料
琼脂降解菌株 Cohnella sp. LGH为本实验室保存
表达载体:pET29a(本实验室保存)
表达菌株:BL21(DE3)plysS(本实验室保存)
引物由invitrogen公司合成
AgaWJ2F: 5’GGggtaccATGATTCTGGTCTTCCTCCTCATGAT3’(Kpn I)
AgaWJ2R: 5’ACGCgtcgacCTACTTCTGTGACAAACGAAGGTTATCG3’(Sal I)
基因组提取试剂盒,质粒提取试剂盒购自Axygen
1.1.2体系、试剂
(1)LB培养基: 琼脂粉 15 g/1L
Yeast Extract 5 g/1L
Nacl 10 g/1L
(2)PCR体系(50 μL):酶Prime Star max 25 μL
引物AgaWJ2F 1 μL
引物AgaWJ2R 1 μL
DNA 1 μL
无菌水 22 μL
(3)酶切体系(60 μL):Bμffer(缓冲液) 6 μL
原文链接:http://www.jxszl.com/hxycl/hxyhj/51348.html
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